Preview

Вестник медицинского института «РЕАВИЗ». Реабилитация, Врач и Здоровье

Расширенный поиск

Анатомическое обоснование объема тканевого дефекта при биопсии сторожевого лимфатического узла: пилотное исследование на аутопсийном материале

https://doi.org/10.20340/vmi-rvz.2025.5.MORPH.3

Аннотация

Актуальность. Несмотря на меньшую инвазивность по сравнению с подмышечной лимфодиссекцией, биопсия сторожевого лимфатического узла при раке молочной железы остаётся процедурой, ассоциированной с риском развития лимфореи и лимфедемы. Одним из теоретически обоснованных подходов к профилактике данных осложнений является аутотрансплантация жировой ткани для заполнения послеоперационного тканевого дефекта, однако доказательная база этого метода отсутствует, а оптимальный объём трансплантата не определён.

Цель: получить предварительные анатомические данные об объёме тканевого дефекта, формирующегося при биопсии сторожевого лимфатического узла, в зависимости от антропометрических параметров для обоснования дизайна проспективного клинического исследования.

Материалы и методы. Пилотное анатомическое исследование выполнено на 12 аутопсийных препаратах женского пола в возрасте 65,1±16,9 года с различным индексом массы тела. Моделирование биопсии сторожевого лимфатического узла включало стандартизированный разрез, удаление лимфоузла I уровня с окружающей клетчаткой и измерение объёма остаточного дефекта методом заполнения гипсовым раствором с последующей волюметрией. Проведён корреляционный анализ зависимости объёма дефекта от индекса массы тела и возраста.

Результаты. Средний объём тканевого дефекта составил 3,5±0,6 см³. Выявлена положительная корреляция с индексом массы тела (r=0,70; p=0,012) и возрастом (r=0,61; p=0,035). Наибольший объём зафиксирован при индексе массы тела более 25 кг/м2 и в возрастной группе 72–82 года, наименьший – при индексе массы тела менее 18,5 кг/м2 и в группе 48–59 лет.

Выводы. Получены предварительные анатомические данные о вариабельности объёма тканевого дефекта при моделировании биопсии сторожевого лимфатического узла. Результаты обосновывают необходимость проспективного клинического исследования для валидации метода измерения in vivo и оценки клинической значимости персонализированного подбора объёма аутотрансплантата. Трупный материал имеет критические ограничения и не позволяет экстраполировать данные в клиническую практику.

Об авторах

З. А. Багателия
Московский многопрофильный научно-клинический центр имени С.П. Боткина
Россия

Багателия Зураб Антонович 

Д-р мед. наук, первый заместитель директора ГБУЗ ММНКЦ им. С.П. Боткина ДЗМ, профессор кафедры хирургии РМАНПО МЗ РФ

2-й Боткинский проезд, д. 5, г. Москва, 125284



Н. П. Чижиков
Московский многопрофильный научно-клинический центр имени С.П. Боткина
Россия

Чижиков Никита Павлович

Заведующий патологоанатомическим отделением

2-й Боткинский проезд, д. 5, г. Москва, 125284



Н. Р. Талыбова
Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования
Россия

Талыбова Наталия Рамизовна

Аспирант кафедры хирургии

ул. Баррикадная, д. 2/1, стр. 1, г. Москва, 125993



М. А. Кислов
Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова
Россия

Кислов Максим Александрович

Д-р мед. наук, доцент, и.о. заведующего кафедрой, кафедра морфологии ИАМ, профессор, кафедра морфологии ИАМ

ул. Островитянова, д. 1, г. Москва, 117513



А. Ю. Степанкин
Московский многопрофильный научно-клинический центр имени С.П. Боткина
Россия

Степанкин Артем Юрьевич

Ординатор патологоанатомического отделения

2-й Боткинский проезд, д. 5, г. Москва, 125284



Список литературы

1. Lyman GH, Somerfield MR, Bosserman LD, et al. Sentinel Lymph Node Biopsy for Patients With Early-Stage Breast Cancer: American Society of Clinical Oncology Clinical Practice Guideline Update. J Clin Oncol. 2017;35(5):561-564. https://doi.org/10.1200/JCO.2016.71.0947

2. Krag DN, Anderson SJ, Julian TB, et al. Sentinel-lymph-node resection compared with conventional axillary-lymph-node dissection in clinically node-negative patients with breast cancer: overall survival findings from the NSABP B-32 randomised phase 3 trial. Lancet Oncol. 2010;11(10):927-933. https://doi.org/10.1016/S1470-2045(10)70207-2

3. Giuliano AE, Ballman KV, McCall L, et al. Effect of Axillary Dissection vs No Axillary Dissection on 10-Year Overall Survival Among Women With Invasive Breast Cancer and Sentinel Node Metastasis: The ACOSOG Z0011 (Alliance) Randomized Clinical Trial. JAMA. 2017;318(10):918-926. https://doi.org/10.1001/jama.2017.11470

4. DiSipio T, Rye S, Newman B, Hayes S. Incidence of unilateral arm lymphoedema after breast cancer: a systematic review and meta-analysis. Lancet Oncol. 2013;14(6):500-515. https://doi.org/10.1016/S1470-2045(13)70076-7

5. Ashikaga T, Krag DN, Land SR, et al. Morbidity results from the NSABP B-32 trial comparing sentinel lymph node dissection versus axillary dissection. J Surg Oncol. 2010;102(2):111-118. https://doi.org/10.1002/jso.21535

6. Wilke LG, McCall LM, Posther KE, et al. Surgical complications associated with sentinel lymph node biopsy: results from a prospective international cooperative group trial. Ann Surg Oncol. 2006;13(4):491-500. https://doi.org/10.1245/ASO.2006.05.013

7. Lucci A, McCall LM, Beitsch PD, et al. Surgical complications associated with sentinel lymph node dissection (SLND) plus axillary lymph node dissection compared with SLND alone in the American College of Surgeons Oncology Group Trial Z0011. J Clin Oncol. 2007;25(24):36573663. https://doi.org/10.1200/JCO.2006.07.4062

8. McLaughlin SA, Wright MJ, Morris KT, et al. Prevalence of lymphedema in women with breast cancer 5 years after sentinel lymph node biopsy or axillary dissection: objective measurements. J Clin Oncol. 2008;26(32):5213-5219. https://doi.org/10.1200/JCO.2008.16.3725

9. Armer JM, Ballman KV, McCall L, et al. Lymphedema symptoms and limb measurement changes in breast cancer survivors treated with neoadjuvant chemotherapy and axillary dissection: results of American College of Surgeons Oncology Group (ACOSOG) Z1071 (Alliance) substudy. Support Care Cancer. 2019;27(2):495-503. https://doi.org/10.1007/s00520-018-4334-7

10. Morrow M, Van Zee KJ, Patil S, Petruolo O, Mamtani A, Barrio AV. Trends in Reoperation After Initial Lumpectomy for Breast Cancer: Addressing Overtreatment in Surgical Management. JAMA Oncol. 2017;3(10):1352-1357. https://doi.org/10.1001/jamaoncol.2017.0774

11. Dalberg K, Johansson H, Johansson U, Rutqvist LE. A randomised study of axillary drainage and pectoral fascia preservation after mastectomy for breast cancer. Eur J Surg Oncol. 2004;30(6):602-609. https://doi.org/10.1016/j.ejso.2004.03.020

12. Fu MR, Axelrod D, Guth AA, et al. Comorbidities and Quality of Life among Breast Cancer Survivors: A Prospective Study. J Pers Med. 2015;5(3):229-242. https://doi.org/10.3390/jpm5030229

13. Pogson CJ, Adwani A, Ebbs SR. Seroma following breast cancer surgery. Eur J Surg Oncol. 2003;29(9):711-717. https://doi.org/10.1016/s0748-7983(03)00096-9

14. Mortimer PS, Rockson SG. New developments in clinical aspects of lymphatic disease. J Clin Invest. 2014;124(3):915-921. https://doi.org/10.1172/JCI71608

15. Yao Y, Harmann L, Stehle K, et al. Three-dimensional anatomical measurements for planning of axillary surgery in breast cancer. Sci Rep. 2020;10(1):10411. https://doi.org/10.1038/s41598-020-67298-3

16. Kuk JL, Saunders TJ, Davidson LE, Ross R. Age-related changes in total and regional fat distribution. Ageing Res Rev. 2009;8(4):339-348. https://doi.org/10.1016/j.arr.2009.06.001

17. Ahmed M, Rubio IT, Kovacs T, Klimberg VS, Douek M. Systematic review of axillary reverse mapping in breast cancer. Br J Surg. 2016;103(3):170-178. https://doi.org/10.1002/bjs.10041

18. Sbitany H, Langstein HN. Acellular dermal matrix in primary breast reconstruction. Aesthet Surg J. 2011;31(7 Suppl):30S-37S. https://doi.org/10.1177/1090820X11417575

19. Sajid MS, Shakir AJ, Khatri K, et al. The role of closed suction drainage in breast surgery: a systematic review. Breast J. 2011;17(4):359-363. https://doi.org/10.1111/j.1524-4741.2011.01102.x

20. Thomson DR, Sadideen H, Furniss D. Wound drainage after axillary dissection for carcinoma of the breast. Cochrane Database Syst Rev. 2013;2013(10):CD006823. https://doi.org/10.1002/14651858.CD006823.pub2

21. Gençay IB, Ataseven B, Capelle J, Liedtke C, Kümmel S. Early postoperative mobilization following lymph node dissection for gynaecological cancer. Geburtshilfe Frauenheilkd. 2016;76(2):132-137.

22. Srivastava V, Basu S, Shukla VK. Seroma formation after breast cancer surgery: what we have learned in the last two decades. J Breast Cancer. 2012;15(4):373-380. https://doi.org/10.4048/jbc.2012.15.4.373

23. Kaoutzanis C, Xin M, Ballard TN, et al. Autologous Fat Grafting After Breast Reconstruction in Postmastectomy Patients: Complications, Biopsy Rates, and Locoregional Cancer Recurrence Rates. Ann Plast Surg. 2016;76(3):270-275. https://doi.org/10.1097/SAP.0000000000000561

24. Lo Torto F, Patanè L, Abbaticchio D, Pagnotta A, Ribuffo D. Autologous Fat Grafting (AFG): A Systematic Review to Evaluate Oncological Safety in Breast Cancer Patients. J Clin Med. 2024;13(15):4369. https://doi.org/10.3390/jcm13154369

25. Casarrubios JM, Francés M, Fuertes V, et al. Oncological outcomes of lipofilling in breast reconstruction: a matched cohort study with 250 patients. Gland Surg. 2021;10(3):914-923. https://doi.org/10.21037/gs-20-775

26. Navarro AS, Omalek D, Chaltiel L, et al. Oncologic safety of autologous fat grafting in primary breast reconstruction after mastectomy for cancer. Eur J Surg Oncol. 2024;50(4):107998. https://doi.org/10.1016/j.ejso.2024.107998

27. Zuk PA, Zhu M, Mizuno H, et al. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies. Tissue Eng. 2001;7(2):211-228. https://doi.org/10.1089/107632701300062859

28. Kølle SF, Fischer-Nielsen A, Mathiasen AB, et al. Enrichment of autologous fat grafts with ex-vivo expanded adipose tissue-derived stem cells for graft survival: a randomised placebo-controlled trial. Lancet. 2013;382(9898):1113-1120. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(13)61410-5

29. Coleman SR. Structural fat grafts: the ideal filler? Clin Plast Surg. 2001;28(1):111-119.

30. Kølle SF, Duscher D, Fischer-Nielsen A, et al. Mesenchymal stem cells from adipose tissue promote lymphangiogenesis in a mouse model of reconstructive surgery. Plast Reconstr Surg. 2014;134(6):1189-1198. https://doi.org/10.1097/PRS.0000000000000718

31. Toyserkani NM, Christensen ML, Sheikh SP, Sørensen JA. Adipose-derived stem cells: new treatment for wound healing? Ann Plast Surg. 2015;75(1):117-123. https://doi.org/10.1097/SAP.0000000000000083

32. Scioli MG, Bielli A, Arcuri G, et al. Ageing and microenvironment in breast cancer: The role of adipose tissue and immune system. Breast. 2017;33:145-152. https://doi.org/10.1016/j.breast.2017.03.011

33. Veronesi U, Paganelli G, Viale G, et al. A randomized comparison of sentinel-node biopsy with routine axillary dissection in breast cancer. N Engl J Med. 2003;349(6):546-553. https://doi.org/10.1056/NEJMoa012782

34. Yao Y, Harmann L, Stehle K, et al. Three-dimensional anatomical measurements for planning of axillary surgery in breast cancer. Sci Rep. 2020;10(1):10411. https://doi.org/10.1038/s41598-020-67298-3

35. Hughes VA, Frontera WR, Roubenoff R, Evans WJ, Singh MA. Longitudinal changes in body composition in older men and women: role of body weight change and physical activity. Am J Clin Nutr. 2002;76(2):473-481. https://doi.org/10.1093/ajcn/76.2.473

36. Kuk JL, Saunders TJ, Davidson LE, Ross R. Age-related changes in total and regional fat distribution. Ageing Res Rev. 2009;8(4):339-348. https://doi.org/10.1016/j.arr.2009.06.001

37. Holzapfel GA, Sommer G, Gasser CT, Regitnig P. Determination of layer-specific mechanical properties of human coronary arteries with non-atherosclerotic intimal thickening and related constitutive modeling. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2005;289(5):H2048-H2058. https://doi.org/10.1152/ajpheart.00934.2004

38. Kuroi K, Shimozuma K, Taguchi T, et al. Pathophysiology of seroma in breast cancer. Breast Cancer. 2005;12(4):288-293. https://doi.org/10.2325/jbcs.12.288

39. Khouri RK, Rigotti G, Cardoso E, Khouri RK Jr, Biggs TM. Megavolume autologous fat transfer: part I. Theory and principles. Plast Reconstr Surg. 2014;133(3):550-557. https://doi.org/10.1097/01.prs.0000438044.06387.2a


Рецензия

Для цитирования:


Багателия З.А., Чижиков Н.П., Талыбова Н.Р., Кислов М.А., Степанкин А.Ю. Анатомическое обоснование объема тканевого дефекта при биопсии сторожевого лимфатического узла: пилотное исследование на аутопсийном материале. Вестник медицинского института «РЕАВИЗ». Реабилитация, Врач и Здоровье. 2025;15(5):181-190. https://doi.org/10.20340/vmi-rvz.2025.5.MORPH.3

For citation:


Bagateliya Z.A., Chizhikov N.P., Talybova N.R., Kislov M.A., Stepankin A.Yu. Anatomical rationale for tissue defect volumein sentinel lymph node biopsy: a pilot study on autopsy samples. Bulletin of the Medical Institute "REAVIZ" (REHABILITATION, DOCTOR AND HEALTH). 2025;15(5):181-190. (In Russ.) https://doi.org/10.20340/vmi-rvz.2025.5.MORPH.3

Просмотров: 13

JATS XML


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2226-762X (Print)
ISSN 2782-1579 (Online)